Регенерация винограда в культуре in vitro

Учитывая мировой и российский опыт сохранения образцов винограда, одним из наиболее надежных способов является создание дублетной in vitro коллекции. Однако, в связи с созданием дублетных коллекций винограда и развитием методик геномного редактирования, существует необходимость подбора оптимального состава среды, позволяющего получать при введении растений винограда в культуру in vitro максимальный коэффициент каллусообразования и регенерации. Это позволит получить необходимое количество материала для дальнейшего редактирования и последующей регенерации растений с нокаутом целевых генов с целью улучшения хозяйственно ценных признаков. Для винограда это прежде всего повышение устойчивости к возбудителю мучнистой росы Uncinula necator Burill. Изучено влияние на морфогенез многих сельскохозяйственных культур активных веществ биологического и синтетического происхождения, в том числе и для растений-регенерантов рода Vitis L. Однако, род Vitis очень разнообразен и неоднороден по своей генетической и физиолого-морфологической структуре, вследствие чего рекомендуемые среды и компоненты для выращивания в условиях in vitro могут подходить не каждому сорту. Местные российские сорта винограда лучше подходят к локальным условиям выращивания, поэтому следует сосредоточить усилия на отработке методик, связанных с сохранением местных сортов в условиях коллекций in vitro. Знание природы генов, контролирующих определенные признаки, как и наличие образцов винограда, геном которых секвенирован, способствуют успешному проведению in silico анализа для создания редактирующих конструкций.

1. Агаханов М.М. Генетическое разнообразие и селекционная ценность образцов ампелографической коллекции ВИР): дис. … канд. биол. наук. Санкт-Петербург: ВИР; 2022.

2. Alleweldt G., Harst-Langenbucher M. Der einflus von in vitro wachtuxnisinhibitoren auf die zangzeit-lagerund von in vitro kulturen der rebe. Vitis. 1987;26(2):57-64. [In German]. DOI: 10.5073/vitis.1987.26.57-64

3. Amato F.D. The problem of genetic stability in plant tissue and cell cultures. In: O.N. Franfel, I.G. Hawkes (eds.). Crop genetic resources for today and tomorrow. Cambridge University Press; 1975.

4. Andersson M., Turesson H., Olsson N., Fält A.-S., Ohlsson P., Gonzalez M.N., Samuelsson M., Hofvander P. Genome editing in potato via CRISPR-Cas9 ribonucleoprotein delivery. Physiologia Plantarum. 2018;164(4):378-384. DOI: 10.1111/ppl.12731

5. Barceló M., Wallin A., Medina J.J., Gil-Ariza D.J., López-Casado G., Juarez J., Sánchez-Sevilla J.F., López-Encina C., López-Aranda J.M., Mercado J.A., Pliego-Alfaro F. Isolation and Culture of Strawberry Protoplasts and Field Evaluation of Regenerated Plants. Scientia Horticulturae. 2019;256:108-552. DOI: 10.1016/j.scienta.2019.108552

6. Barlass M., Skene K.G.M. Studies on the fragmented shoot apex of grapevine: I. The regenerative capacity of leaf primordial fragments in vitro. Journal of Experimental Botany. 1980;31:483-488. DOI: 10.1093/jxb/31.2.483

7. Barlass K.G.V., Skene K.G.M. Clonal propagation through tissue culture. Australian Grape Grower and Winemaker. 1979;16:12-13.

8. Benson E.E., Danaher J.E., Pimbley I.M., Anderson C.T., Wake J.E., Daley S., Adams L.K. In vitro micropropagation of Primula scotica: a rare Scottish plant. Biodiversity and Conservation. 2000;9:711-726. DOI: 10.1023/A:1008941726419

9. Bidabadi S.S, Jain S.M. Cellular, molecular, and physiological aspects of in vitro plant regeneration. Plants. 2020;9(6):702. DOI: 10.3390/plants9060702

10. Blaich R. Recherches sur les cultures de meristemes et d'organes de vigne in vitro en vue de la selection et de la conservation de genotypes. Bulletin de l'O.I.V. 1985;58(650/651):391-395. [In French]

11. Boutilier K., Offringa R., Sharma V.K., Kieft H., Ouellet T., Zhang L., Hattori J., Liu C.M., van Lammeren A.A.M., Miki B.L.A., Custers J.B.M., van Lookeren Campagne M.M. Ectopic expression of BABY BOOM triggers a conversion from vegetative to embryonic growth. Plant Cell. 2002;14:1737-1749. DOI: 10.1105/tpc.001941

12. Bower D.J. Genetic resources worldwide. Trends in Biotechnology. 1989;7(5):111-116. DOI: 10.1016/0167-7799(89)90084-X

13. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе. Москва; 1999.

14. Chen Z., Hsiao K.-C., Bornman C.H. Ploidy and division efficiency of petiolar protoplasts of Brassica napus. Hereditas. 1994;120:41-46. DOI: 10.1111/j.1601-5223.1994.00041.x

15. Chen L., Tong J., Xiao L., Ruan Y., Liu J., Zeng M., Huang H., Wang J.W., Xu L. YUCCA-mediated auxin biogenesis is required for cell fate transition occurring during de novo root organogenesis in Arabidopsis. Journal of Experimental Botany. 2016;67:4273-4284. DOI: 10.1093/jxb/erw213

16. Craig W., Gargano D., Scotti N., Nguyen T.T., Lao N.T., Kavanagh T.A., Dix T.A., Cardi T. Direct gene transfer in potato: a comparison of particle bombardment of leaf explants and PEG-mediated transformation of protoplasts. Plant Cell Reports. 2005;24:603-611. DOI: 10.1007/s00299-005-0018-0

17. Додуева И.Е., Творогова В.Е., Азарахш М., Лебедева М.А., Лутова Л.А. Стволовые клетки растений: единство и многообразие. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2016;20(4):441-458. DOI: 10.18699/VJ16.172

18. Егоров Е.А., Ильяшенко О.М., Коваленко А.Г., Носульчак В.А., Нудьга Т.А., Панкин М.И., Петров В.С., Серпуховитина К.А., Сундырева М.А., Талаш А.И., Трошин Л.П. Анапская Ампелографическая коллекция. Краснодар: СКЗНИИСиВ Россельхозакадемии; 2009.

19. Elmaghrabi A., Ochatt S. Isoenzymes and flow cytometry for the assessment of true-to-typeness of calluses and cell suspensions of barrel medic prior to regeneration. Plant Cell, Tissue Organ Culture. 2022;85:31-43. DOI: 10.1007/s11240-005-9046-2

20. Forsline P.L. Progress in developing a national program for Malus and Vitis germplasm maintenance and evaluation in the USA. Acta Horticulturae. 1988;224:33-38. DOI: 10.17660/ActaHortic.1988.224.2

21. Galzy R. Les possibilities de conservation in vitro d’ une collection de clones de vignes. Bulletin de l'O.I.V. 1985;650-651:377-390. [In French].

22. Gancheva M.S., Malovichko Y.V., Polushkevich L.O., Dodueva I.E., Lutova L.A., Plant peptide hormones. Russian Journal of Plant Physiology. 2019;66(2):171-189. DOI: 10.1134/S1021443719010072

23. Гавриленко Т.А., Дунаева С.Е., Трускинов Э.В., Антонова О.Ю., Пендинен Г.И., Лупышева Ю.В., Роговая В.В., Швачко Н.А. Стратегия долгосрочного сохранения генофонда вегетативно размножаемых сельскохозяйственных растений в контролируемых условиях среды. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2007;164:273-285.

24. FAO, 2014. Genebank Standards for Plant Genetic Resources for Food and Agriculture. Rev. ed. Rome: FAO; 2014.

25. Gamburg K.Z., Yurieva O.V., Kazanovsky S.G. The application of clonal micropropagation for conservation of rare, endemic and endangered plant spesies. In: The IX International Conference «The Biology of plant cells in vitro and biotechnology»: Abstract; 2008 September 8-12; Zvenigorod, Russia. Moscow; 2008. p.87. URL: https://ippras.ru/upload/files/Abstracts.pdf [дата обращения: 27.11.2022].

26. George E.F., Hall M.A., De Klerk G.-J. (eds). Plant propagation by tissue culture. Vol. 1. The Background. Springer Dordrecht; 2008. 502 p. DOI: 10.1007/978-1-4020-5005-3

27. Голодрига П.Я., Зленко В.А., Чекмарев Л.А., Бутенко Р.Г., Левенко Б.А., Пилин Н.М. Методические рекомендации по клональному микроразмножению винограда. Ялта: Магарач; 1986. 56 с.

28. Grimplet J., Pimentel D., Agudelo-Romero P., Martinez-Zapater J.M., Fortes A.M. The LATERAL ORGAN BOUNDARIES Domain gene family in grapevine: genome-wide characterization and expression analyses during developmental processes and stress responses. Scientific Reports. 2017;7(1):15968. DOI: 10.1038/s41598-017-16240-5

29. Harding E.W., Tang W., Nichols K.W., Fernandez D.E., Perry S.E. Expression and maintenance of embryogenic potential is enhanced through constitutive expression of AGAMOUS-Like 15. Plant Physiology. 2003;133:653-663. DOI: 10.1104/pp.103.023499

30. Harst-Langenbucher M. Long term storage of in vitro cultures of grapevines. Die Langzeit-lagerung von in vitro Kulturen der Rebe [dissertation]. 1982.

31. Hecht V., Vielle-Calzada J.P., Hartog M.V., Schmidt E.D., Boutilier K., Grossniklaus U., de Vries S.C. The Arabidopsis Somatic Embryogenesis Receptor Kinase 1 gene is expressed in developing ovules and embryos and enhances embryogenic competence in culture. Plant Physiology. 2001;127:803-816. DOI: 10.1104/pp.010324

32. Heywood V.H., Iriondo J.M. Plant conservation: old problems, new perspectives. Biological Conservation. 2003;113:321-335. DOI: 10.1016/S0006-3207(03)00121-6

33. Iacob M. Deloire A. Caspar Th. Conservation au froid de la vigne en culture in vitro. Mededelingen van de Faculteit Landbouwwetenschappen, Rijksuniversiteit Gent 1989;54(2A):455-468. [In French]

34. Ikeuchi M., Iwase A., Rymen B., Lambolez A., Kojima M., Takebayashi Y., Heyman J., Watanabe S., Seo M., De Veylder L., Sakakibara H., Sugimoto K. Wounding triggers callus formation via dynamic hormonal and transcriptional changes. Plant Physiology. 2017;175:1158-1174. DOI: 10.1104/pp.17.01035

35. Ильницкая Е.Т., Макаркина М.В. Применение ДНК-маркеров в современных селекционно-генетических исследованиях винограда. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2016;20(4):528-536. DOI: 10.18699/VJ16.163

36. Iocco P, Franks T, Thomas MR. Genetic transformation of major wine grape cultivars of Vitis vinifera L. Transgenic Research. 2001;10:105-112. DOI: 10.1023/A:1008989610340

37. Iwase A., Mitsuda N., Koyama T., Hiratsu K., Kojima M., Arai T., Inoue Y., Seki M., Sakakibara H., Sugimoto K., Ohme-Takagi M. The AP2/ERF transcription factor WIND1 controls cell dedifferentiation in Arabidopsis. Current Biology. 2011;21(6):508-514. DOI: 10.1016/j.cub.2011.02.020

38. Jarvis D.I., Mayer L.Y., Klemik H., Guarino L., Smale M., Brown A.H.D., Sadiki M., Sthapit B., Hodgkin T. A training guide for in situ conservation on farm. Version 1. Rome: IPGRI; 2000.

39. Кашин В.И., Борисова А.А., Приходько Ю.Н., Суркова О.Ю., Упадышев М.Т., Метлицкая К.В., Лапинская М.П., Цубера Л.В., Литвиненко И.С., Веретенникова Н.П. Технологический процесс получения безвирусного посадочного материала плодовых и ягодных культур: методические указания. Москва; 2001.

40. Кершенгольц Б.М., Ремигайло П.А., Хлебный Е.С. Банк семян в вечной мерзлоте. НАУКА из первых рук. 2011;42(6):6-9. URL: https://scfh.ru/papers/bank-semyan-v-vechnoy-merzlote [дата обращения: 15.11.2022].

41. Kiełkowska A., Adamus A. Peptide growth factor phytosulfokine-α stimulates cell divisions and enhances regeneration from B. oleracea var. capitata L. protoplast culture. Journal of Plant Growth Regulation. 2019;38:931-944. DOI: 10.1007/s00344-018-9903-y

42. Lardon R., Geelen D. Natural variation in plant pluripotency and regeneration. Plants. 2020;24(10):1261. DOI: 10.3390/plants9101261

43. Lardon R, Wijnker E, Keurentjes J, Geelen D. The genetic framework of shoot regeneration in Arabidopsis comprises master regulators and conditional fine-tuning factors. Communications Biology. 2020;3(1):549. DOI: 10.1038/s42003-020-01274-9

44. Lassoued R., Phillips P.W.B., Macall D.M., Hesseln H., Smyth S.J. Expert opinions on the regulation of plant genome editing. Plant Biotechnology Journal. 2021;19(6):1104-1109. DOI: 10.1111/pbi.13597

45. Leng X., Wei H., Xu X., Ghuge S.A., Jia D., Liu G., Wang Y., Yuan Y. Genome-wide identification and transcript analysis of TCP transcription factors in grapevine. BMC Genomics. 2019;20(1):786. DOI: 10.1186/s12864-019-6159-2

46. Licausi F., Giorgi F.M., Zenoni S., Osti F., Pezzotti M., Perata P. Genomic and transcriptomic analysis of the AP2/ERF superfamily in Vitis vinifera. BMC Genomics. 2010;11:719. DOI: 10.1186/1471-2164-11-719

47. Liu J., Sheng L., Xu Y., Li J., Yang Z., Huang H., Xu L. WOX11 and 12 are involved in the first-step cell fate transition during de novo root organogenesis in Arabidopsis. Plant Cell. 2014;26:1081-1093. DOI: 10.1105/tpc.114.122887

48. Lotan T., Ohto M., Yee K.M., West M.A., Lo R., Kwong R.W., Yamagishi K., Fischer R.L., Goldberg R.B., Harada J.J. Arabidopsis LEAFY COTYLEDON1 is sufficient to induce embryo development in vegetative cells. Cell. 1998;93:1195-1205. DOI: 10.1016/S0092-8674(00)81463-4

49. Lukaszewska E., Virden R., Sliwinska E. Hormonal control of endoreduplication in sugar beet (Beta vulgaris L.) seedlings growing in vitro. Plant Biology. 2012;14:216-222. DOI: 10.1111/j.1438-8677.2011.00477.x

50. Lup S.D., Tian X., Xu J., Perez-Perez J.M. Wound signaling of regenerative cell reprogramming. Plant Science. 2016;250:178-187. DOI: 10.1016/j.plantsci.2016.06.012.

51. Magnien E., Dalschaert X., Faraoni-Sciamanna P. Transmission of a cytological heterogeneity from the leaf to the protoplasts in culture. Plant Science Letters. 1982;25:291-303. DOI: 10.1016/0304-4211(82)90159-6

52. Марченко А.О. Модель процессов репродукции растений. В кн.: IX Международная конференция «Биология клеток растений in vitro и биотехнология»: тезисы; 8-12 сентября 2008 г.; Звенигород, Россия. Москва; 2008. С.242. URL: https://ippras.ru/upload/files/Abstracts.pdf [дата обращения: 27.11.2022]).

53. Марченко А.О., Голодрига П.Л., Клименко 3.П., Пивень К.М. Соматический эмбриоидогенез в культуре ткани винограда. Физиология и биохимия культурных растений. 1987;19(4):408-411.

54. Masani M.Y.A., Noll G., Parveez G.K.A., Sambanthamurthi R., Prüfer D. Regeneration of viable oil palm plants from protoplasts by optimizing media components, growth regulators and cultivation procedures. Plant Science. 2013;210:118-127. DOI: 10.1016/j.plantsci.2013.05.021

55. Машкина О.С., Табацкая Т.М., Морковина С.С., Панявина Е.А. Выращивание посадочного материала тополя белого (Populus alba L.) на основе коллекции in vitro и оценка его себестоимости. Лесотехнический журнал. 2016;6(1):28-44. DOI: 10.12737/18725

56. Медведева Н.И., Поливара Н.В., Трошин Л.П. Особенности микроклонального размножения интродуцентов и клонов винограда. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2008;(40):137-155.

57. Mezzetti B., Pandolfini T., Navacchi O., Landi L. Genetic transformation of Vitis vinifera via organogenesis. BMC Biotechnology. 2002;2:18. DOI: 10.1186/1472-6750-2-18

58. Молканова О.И., Коновалова Т.Ю., Мелещук Е.В., Орлова Н.Д., Королева О.В., Ахметова Л.Р., Ширнина И.В. Создание генетического банка in vitro редких и ценных видов и сортов ГБС РАН. В кн.: Ботанические сады в XXI веке: сохранение биоразнообразия, стратегия развития и инновационные решения: сборник научных материалов II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 20-летию образования Ботанического сада НИУ «БелГУ». Белгород; 2019. С.178-181. URL: https://botanicgarden.bsu.edu.ru/media/uploads/2020/02/botanicheskie-sady_19.pdf [дата обращения: 27.11.2022].

59. Mozgova I., Munoz-Viana R., Hennig L. PRC2 represses hormone-induced somatic embryogenesis in vegetative tissue of Arabidopsis thaliana. PLoS Genetics. 2017;13(1):e1006562. DOI: 10.1371/journal.pgen.1006562

60. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology. 1962;15(3):473-497. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

61. Naegele RP, Londo JP, Zou C, Cousins P. Identification of SNPs associated with magnesium and sodium uptake and the effect of their accumulation on micro and macro nutrient levels in Vitis vinifera. PeerJ. 2021;9:e10773. DOI: 10.7717/peerj.10773

62. Негруль А.М. Происхождение культурного винограда и его классификация. В кн.: Ампелография СССР / под ред. А.М. Фролова-Багреева Москва: Пищепромиздат; 1946. Т. 1. С.159-216.

63. Носульчак В.А., Смурыгин А.С., Трошин Л.П. Сбор, сохранение и анализ генофонда винограда России. Труды по прикладной ботанике и селекции. 2007;161:20-29.

64. Ochatt S.J., Mousset-Déclas C., Rancillac M. Fertile pea plants regenerate from protoplasts when calluses have not undergone endoreduplication. Plant Science. 2000;156(2):177-183. DOI: 10.1016/s0168-9452(00)00250-8

65. Orlikowska T. Effect of in vitro storage at 4ºC on survival and proliferation of apple rootstocks. Acta Horticulturae. 1991;289:251-254. DOI: 10.17660/ActaHortic.1991.289.66

66. Клименко В.П., Павлова И.А. Коллекция сортов, гибридов и клонов винограда в условиях in vitro. В кн.: Перспективы развития виноградарства и виноделия в странах СНГ: Международная научно-практическая конференция, посвященная 180-летию Национального института винограда и вина "Магарач": тезисы докладов и сообщений; 28-30 октября 2008 г.; Ялта, Крым. Ялта; 2008. Т. 1. С.80-81.

67. Павлова И.А., Клименко В.П. Создание и перспективы использования коллекции сортов и гибридов винограда in vitro. В кн.: Актуальные проблемы прикладной генетики, селекции и биотехнологии растений: тезисы Международной научной конференции, посвященной 200-летию Ч. Дарвина и 200-летию Никитского ботанического сада; 03-06 ноября 2009 г.; Ялта, Крым. Ялта; 2009. С.149.

68. Плеханова М.Н. Коллекции генетических ресурсов плодовых и ягодных культур: структура и проблемы сохранения в живом виде. В кн.: Материалы XXI Мичуринских чтений; 28–30 октября 2002 г.; Мичуринск, Россия. Мичуринск; 2002. С.4.

69. Prange A.N.S., Bartsch M., Serek M., Winkelmann T. Regeneration of different Cyclamen species via somatic embryogenesis from callus, suspension cultures and protoplasts. Scientia Horticulturae. 2010;125(3):442-450. DOI: 10.1016/j.scienta.2010.04.018

70. Rai M.K., Shekhawat N.S. Recent advances in genetic engineering for improvement of fruit crops. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2014;116:1-15. DOI: 10.1007/s11240-013-0389-9

71. Rajasekaran K., Mullins M.G. Organogenesis in internode explants of grapevines. Vitis. 1981;20(3):218-227. DOI: 10.5073/vitis.1981.20.218-227

72. Reed B.M., Chang Y. Medium- and long- term storage of in vitro cultures of temperate fruit and nut crops. In: M.K. Razdan, E.C. Cocking (eds). Conservation of Plant Genetic Resources In Vitro. Vol. 1: General Aspects. U.S.A.: Science Publishers, Inc.; 1997. p.67-105.

73. Reed K.M., Bargmann B.O.R. Protoplast regeneration and its use in new plant breeding technologies. Frontiers in Genome Editing. 2021;3(3):734951. DOI: 10.3389/fgeed.2021.734951

74. Ren C., Guo Y., Kong J., Lecourieux F., Dai Z., Li S., Liang Z. Knockout of VvCCD8 gene in grapevine affects shoot branching. BMC Plant Biology. 2020;20(1):47. DOI: 10.1186/s12870-020-2263-3

75. Ревин П. Речь на XVI Международном ботаническом конгрессе. Информационный бюллетень Совета ботанических садов России и Отделения Международного совета по охране растений. 2000;11:38-47.

76. Rymen B., Kawamura A., Lambolez A., Inagaki S., Takebayashi A., Iwase A., Sakamoto Y., Sko K., Favero D.S., Ikeuchi M., Suzuki T., Seki M., Kakatani T., Roudier F., Sugimoto K. Histone acetylation orchestrates wound-induced transcriptional activation and cellular reprogramming in Arabidopsis. Communications Biology. 2019;2:404. DOI: 10.1038/s42003-019-0646-5

77. Sala F., Magnien E., Galli M.G., Dalschaert X., Redrali-Noy G., Spadari S. DNA repair synthesis in plant protoplasts is aphidicolin-resistant. FEBBS Letters. 1982;138(2):213-217. DOI: 10.1016/0014-5793(82)80444-4

78. Saporta R., Pedro-Galan S., Domenech G., Carmen M. Attempts at grapevine (Vitis vinifera L.) breeding through genetic transformation: the main limiting factors. Vitis. 2016;55:173-186. DOI: 10.5073/vitis.2016.55.173-186

79. Sauer N.J., Narváez-Vásquez J., Mozoruk J., Miller R.B., Warburg Z.J., Woodward M.J., Mihiret Y.A., Lincoln T.A., Segami R.E., Sanders S.L., Walker K.A., Beetham P.R., Schöpke C.R., Gocal G.F.W. Oligonucleotide-mediated genome editing provides precision and function to engineered nucleases and antibiotics in plants. Plant Physiology. 2016;170(4):1917-1928. DOI: 10.1104/pp.15.01696

80. Shan Q., Wang Y., Li J., Zhang Y., Chen K., Liang Z., Zhang K., Liu J., Xi J.J., Qiu J.-L., Gao C. Targeted genome modification of crop plants using a CRISPR-Cas system. Nature Biotechnology. 2013;31:686-688. DOI: 10.1038/nbt.2650

81. Sheng X., Zhao Z., Yu H., Wang J., Xiaohui Z., Gu H. Protoplast Isolation and plant regeneration of different doubled haploid lines of cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis). Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2021;107:513-520. DOI: 10.1007/s11240-011-0002-z

82. Shi Z, Halaly-Basha T, Zheng C, Sharabi-Schwager M, Wang C, Galbraith DW, Ophir R, Pang X, Or E. Identification of potential post-ethylene events in the signaling cascade induced by stimuli of bud dormancy release in grapevine. Plant Journal. 2020;104(5):1251-1268. DOI: 10.1111/tpj.14997

83. Stamp J.A., Colby S.M., Meredith C.P. Direct shoot organogenesis and plant regeneration from leaves of grape (Vitis spp.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1990;22:127-133. DOI: 10.1007/BF00043688

84. Stone S.L., Kwong L.W., Yee K.M., Pelletier J., Lepiniec L., Fischer R.L., Goldberg R.B., Harada J.J. LEAFY COTYLEDON2 encodes a B3 domain transcription factor that induces embryo development. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2001;98(20):11806-11811. DOI: 10.1073/pnas.201413498

85. Thakare D., Tang W., Hill K., Perry S.E. The MADS-domain transcriptional regulator AGAMOUS-LIKE15 promotes somatic embryo development in Arabidopsis and soybean. Plant Physiology. 2008;146:1663-1672. DOI: 10.1104/pp.108.115832

86. Tomiczak K., Mikuła A., Sliwinska E., Rybczyński J.J. Autotetraploid plant regeneration by indirect somatic embryogenesis from leaf mesophyll protoplasts of diploid Gentiana Decumbens L.f. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant. 2015;51:350-359. DOI: 10.1007/s11627-015-9674-0

87. Tsuwamoto R., Yokoi S., Takahata Y. Arabidopsis EMBRYOMAKER encoding an AP2 domain transcription factor plays a key role in developmental change from vegetative to embryonic phase. Plant Molecular Biology. 2010;73:481-492. DOI: 10.1007/s11103-010-9634-3

88. Tu M., Fang J., Zhao R., Liu X., Yin W., Wang Y., Wang X., Wang X., Fang Y. CRISPR/Cas9-mediated mutagenesis of VvbZIP36 promotes anthocyanin accumulation in grapevine (Vitis vinifera). Horticulture Research. 2022;19:20-22. DOI: 10.1093/hr/uhac022

89. Творогова В.Е. Гены WOX и PIN в регуляции соматического эмбриогенеза у Medicago truncatula: дис. … канд. биол. наук. Санкт-Петербург: ВИР; 2016.

90. Ухатова Ю.В., Гавриленко Т.А. Методы криоконсервации вегетативно размножаемых культурных растений. Биотехнология и селекция растений. 2018;1(1):52-63. DOI: 10.30901/2658-6266-2018-1-52-63

91. Вечёрко Н.А., Ромаданова Н.В., Жумабеков Е.Ж. Сохранение биоразнообразия яблони методом культуры тканей. В кн.: IX Международная конференция «Биология клеток растений in vitro и биотехнология»: тезисы; 8-12 сентября 2008 г.; Звенигород, Россия. Москва; 2008. С.70.

92. Ветчинкина Е.М., Малаева Е.В., Мамаева Н.А., Зинина Ю.М., Коновалова Л.Н., Коротков О.И., Молканова О.И. Использование биотехнологических методов для сохранения генофонда редких и ценных видов растений. В кн.: IX Международная конференция «Биология клеток растений in vitro и биотехнология»: тезисы; 8-12 сентября 2008 г.; Звенигород, Россия. Москва; 2008. С.66.

93. Ветчинкина Е.М., Молканова О.И. Использование эмбриокультуры для создания генетических банков растений in vitro. В кн.: IX Международная конференция «Биология клеток растений in vitro и биотехнология»: тезисы; 8-12 сентября 2008 г.; Звенигород, Россия. Москва; 2008. С.68.

94. Высоцкая О.Н. Длительное сохранение in vitro коллекции растений земляники. Физиология растений. 1994;41(6):935-941.

95. Высоцкий В.А., Высоцкая О.Н. Культура in vitro для длительного хранения ценных генотипов. В кн.: Материалы XXI Мичуринских чтений; 28–30 октября 2002 г.; Мичуринск, Россия. Мичуринск; 2002. С.12-13.

96. Wang C., He R., Lu J., Zhang Y. Selection and regeneration of Vitis vinifera Chardonnay hydroxyproline-resistant calli. Protoplasma. 2018;255(5):1413-1422. DOI: 10.1007/s00709-018-1240-2

97. Woo J.W., Kim J., Kwon S.I., Corvalán C., Cho S.W., Kim H., Kim S.-G., Kim S.-T., Choe S., Kim J.-S. DNA-free genome editing in plants with preassembled CRISPR-Cas9 ribonucleoproteins. Natural Biotechnology. 2016;33:1162-1164. DOI: 10.1038/nbt.3389

98. Xiao J., Wagner D. Polycomb repression in the regulation of growth and development in Arabidopsis. Current Opinion in Plant Biology. 2015;23:15-24. DOI: 10.1016/j.pbi.2014.10.003

99. Xu L., Huang H. Genetic and epigenetic controls of plant regeneration. Chapter One. In: B. Galliot (ed.) Current Topics in Developmental Biology. Vol. 108. Mechanisms of Regeneration. Cambridge, Massachusetts: Academic Press; 2014. p.1-33. DOI: 10.1016/B978-0-12-391498-9.00009-7

100. Ерёмин Г.В., Плеханова М.Н., Царенко В.П. В садах и питомниках США. Садоводство и виноградарство. 1991;1:42-44.

101. Зеленянская Н.Н., Джабурия Л.В., Теслюк Н.И., Подуст Н.В., Гогулинская Е.И. Методы хранения коллекционного материала винограда в культуре in vitro. Одесса: Национальный научный центр «Институт виноградарства и виноделия им. В.Е. Таирова»; 2016.

102. Zhang Y., Malzahn A.A., Sretenovic S., Qi Y. The emerging and uncultivated potential of CRISPR technology in plant science. Nature Plants. 2019;5:778-794. DOI: 10.1038/s41477-019-0461-5

103. Жученко А.А. Адаптивный потенциал культурных растений. Кишинев: Штиинца;1988: С.238-253.